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A blood sampling technique for prehatched chicks

Authors

  • Maggie J. Watson

    Corresponding author
    1. School of Animal & Veterinary Sciences, Charles Sturt University, Wagga Wagga, New South Wales 2678 Australia
    2. School of Environmental Sciences, Charles Sturt University, Albury, New South Wales 2641 Australia
      Email: mawatson@csu.edu.au
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Email: mawatson@csu.edu.au

Abstract

ABSTRACT Collecting blood from neonatal or prehatched chicks is sometimes necessary, requiring specialized blood collection techniques and skills. However, such sampling can be difficult and could potentially have adverse effects. I developed a method for collecting blood from chicks still in an egg. The technique involves enlarging the pipping hole, removing the chick's head to take blood from a jugular vein, and returning the chick into its original position in the egg to complete hatching back in the nest. I used this technique on Crested Tern (Thalasseus bergii) chicks (N= 13), with no apparent adverse effects to growth or short-term survival. The amount of blood extracted (0.1–0.15 ml) was sufficient for a blood smear, hematocrit, and total white blood cell count. This method should be useful for eggs as small as 40 mm in length; eggs smaller than this would likely not be good candidates for this technique because eggshells may be too thin to safely handle. This technique may be useful for investigators studying the immunological and endocrinological transition between embryos and hatchlings.

RESUMEN

El tomar muestras de sangre de neonatos o individuos, previo a la eclosión, en ocasiones es necesario lo que requiere de destrezas particulares y técnicas especializadas para tomar la muestra. Sin embargo, este muestreo puede ser difícil y, potencialmente, puede tener efectos adversos. Desarrollé un método para tomar muestras de sangre de polluelos que aun se encontraban dentro del huevo. La técnica envuelve el agrandamiento del agujero de eclosionar, el remover la cabeza del polluelo para tomar una muestra de sangre de la yugular, regresar la cabeza a la posición original y devolver el pichón al nido, para que se complete la eclosión. Utilicé esta técnica en pichones (N= 13) de Thalasseus bergii, sin aparente efecto adverso en el crecimiento y sobrevivencia, a corto alcance. La cantidad de sangre extraída (0.1–0.15 ml), fue suficiente para hacer un frotis, un hematocrito y un conteo total de células blancas. Este método debe ser útil para huevos tan pequeños como 44 mm de longitud; huevos más pequeños pudieran no cualificar para esta técnica porque el cascarón pudiera ser muy delgado para manipularlo con seguridad. Esta técnica pudiera ser útil para investigadores que estudian la endocrinología y la transición inmunológica entre embrión y recién nacido.

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